Россия
Россия
Россия
Россия
Россия
В работе дана оценка результатов генетического анализа племенного ядра сарбоянского карпа ООО «Эко-парк». Анализ был проведен методом ПЦР диагностики по гену COXI. Выявлены преимущественные гаплотипы племенной группы сарбоянского карпа. Анализ медианной сети гаплотипов показал, что рассматриваемые гаплотипы карпа и дикого сазана формируют две гаплогруппы, связанные через 1 гаплотип. Один из гаплотипов, наиболее многочисленный среди них – H1, в него входит до 78% изученного массива рыб. Стадо рыб, взятых для исследования, было изучено по 8 бонитировочным промерам (массе тела, абсолютной длине тела, длине тела без хвостового плавника, наибольшей высоте, ширине и обхвату). Был проведен сравнительный анализ особенностей телосложения рыб самцов и самок, принадлежащих к различным гаплотипам. Внутри гаплогруппы существует половой диморфизм по морфологическим признакам. Самцы от самок достоверно отличаются по массе, толщине и обхвату тела, а также – по соответствующим индексам телосложения. Вторая, наиболее многочисленная гаплогруппа – H16, входящие в нее самки превосходят самцов по массе тела, толщине и обхвату. Сравнение самцов из разных групп h1 и h16 не выявило различие морфологического признаков, те же закономерности установлены по отношению к экстерьеру самок. Филогенетический анализ, проведенный на основе собственных гаплотипов и взятых из международной базы данных NCBI, подтверждает известные сведения о том, что сарбоянский карп представляет собой глубоко гибридную группировку, созданную на основе вводного скрещивания белорусских карпов и амурского сазана.
сарбоянский карп, РЦР диагностика, гаплотипы, индексы телосложения, стандарт породы
Актуальность исследований
Аквакультура – одна из наиболее скорорастущих сфер сельского хозяйства. Генетическое усовершенствование культивируемых рыб представляет значительную роль в оптимизации, а также в повышении производства продуктов аквакультуры [1].
Карп обычный (Cyprinus carpio, L., а также Cyprinus rubrofuscus) – единственный из наиболее часто выращиваемых видов рыб в мире. Его производство увеличивается с каждым годом, к примеру, в 2014 г. размер выращивания в мире достиг 4 мнл т, а также 145 тыс. т в Европе [2]
Не так давно проведено множество исследований, затрагивающих генетическое усовершенствование карпа [3; 4; 5]. Необходимо отметить исследования по генетическому маркированию карпа [6; 7]. Но большая часть исследований сосредоточена на продуктивных свойствах, таких как темп роста, а также рыбопродуктивность (высокоурожайность). Вместе с тем, не меньше изучений проведено для исследования генетического фона признаков, связанных с успехом зимовки карпа и влиянием зимовки на продуктивность в дальнейший вегетационный промежуток. Исследователи отмечают, что в условиях резко континентального климата подледный промежуток длится приблизительно 6 месяцев (с ноября до конца апреля), и в последующий вегетационный сезон карп демонстрирует большую скорость увеличения массы и длины тела. Селекционные проекты усовершенствования карповых рыб реализуются не часто, по сравнению с проектами для лососевых видов аквакультуры.
Селекционные программы для данного вида в целом характеризуются формированием разных штаммов, которые применяются с целью использования гетерозиса по показателям, связанным со скоростью роста (к примеру, Linhart et al., 2008; Vandeputte, 2003) [8; 9]. Это объясняет по какой причине таким скрещиваниям, при разведении данного вида, уделяется большое внимание. Но изучения, проведенные Wohlfarth et al. (1975) чистыми штаммами, показали, что чистые линии или породы работают приблизительно таким образом, как и кроссы [10].
Значительная доля наблюдаемого гетерозиса, вернее всего, обусловлена тем, что родительские штаммы очень инбредны. Непосредственно скрещивание порождает сокращение инбридинга по показателям продуктивности, а также – по устойчивости к болезням. Но выращивание отдельных линий повышает расходы хозяйств на их содержание. Кроме этого, имеются разнообразные взгляды по данной проблеме, например, скрещивание само по себе никак не представляет интереса в долговременной перспективе, а также по этой причине его необходимо анализировать равно как добавок к чистому разведению, в таком случае имеется подбор, согласно аддитивным генетическим результатам, изнутри родительских штаммов [11]. Brody et al. (1981) с коллегами выявили крупные отличия в росте между семействами полусибсов карпа, и дали оценку доли наследственности роста карпа в размере 0,47, в сравнении с родительским потомством [12]. Совершенно не так давно, Vandeputte et al. (2008) заявили, что существует наследуемость 0,44 между общей массой тела и продуктивностью (урожайностью) [13].
В Российской Федерации ученые, занимающиеся селекцией пород карпа полагают, что спад или стабилизация результативных качеств карпа наступает в седьмом (F7), восьмом (F8) поколении селекции, при этом воздействие инбридинга никак не прослеживается. Это достигается правильным планом селекции в стадах карпа [14].
В Западной Сибири селекционно-племенная деятельность со стадами рыб (карпа и форели) активно проводилась в 60-х годах XX столетия и не прекращается вплоть до нынешнего периода. Именно она ориентирована на формирование пород, хорошо адаптированных к континентальному климату. Карп, точнее его первоначальный вид сазан (Ciprinus carpio, L.), считается интродуцентом, завезенным в Западную Сибирь в 1928 году. Цель интродукции – товарное разведение в озерах Западной Сибири, так как в природной ихтиофауне отсутствуют скорорастущие виды рыб. Но существовало весьма большое количество мнений, заключающихся в том, что карп никак не сможет приспособиться к погодным условиям юга Сибири, это связано с продолжительными условиями зимовки (6 месяцев) в водоемах при температуре 0оϹ. Вследствие 1-ой интродукции под руководством Б.Г. Иоганзена (1928) [15] было перевезено приблизительно 42316 годовиков голого, а также зеркального карпа и посажено в оз. Сартлан Новосибирской области. Успеха данная деятельность не имела, однако единичные экземпляры попадались в озере вплоть до 1934 года. Это объясняется некоторыми факторами. Оз. Сартлан время от времени – заморный водоем, зимние заморы появляются в среднем через 3-5 лет. Водяное равновесие данного водоема сопряжено с аккумуляцией весенних паводковых вод, ко времени прогрева воды до нерестовых температур, поводковые воды успевают сойти и, таким образом, в прибрежной области нет свежезалитой растительности – икрометание делается неосуществимым, так писали Б.Г. Иоганзен, А.Н. Петкевич [16]. В 1932 г. опыт вселения повторяли с целью интродукции. Были взяты галицийские карпы из Молдавии, которые прошли поэтапную акклиматизацию в прудах Средней России, а затем – Предуралья. Карпы были интродуцированы в различные водоемы и пруды Алтайского края [17].
Независимо от неудач, акклиматизация карпа к климатическим условиям Юга Западной Сибири была успешно проведена. В начале 60-х годов XX столетия была активизирована деятельность по развитию рыбоводства в Сибири, которая требовала формирования высокопродуктивных стад карпа. Из пруда колхоза им. Карла Маркса, находящегося в Змеиногорском районе Алтайского края, в 1964 г. было выловлено 46 самок и 74 самца зеркального карпа в возрасте 2-3 лет [18]. Они стали начальным стадом при формировании породы алтайский зеркальный карп. Рыбы одичали. Форма их туловища уклонилась к сазаньему типу: уменьшилась высота туловища, а также обхват, возросла прогонистость.
Во время нереста плодовитость на самку 5 лет составила 25,5-75,0 тыс. икринок. Отмечалась значительная вариабельность показателя – 56%. В 1996 г., вследствие селекции, была сформирована порода алтайский зеркальный карп (а.с. №6135) [19]. Вплоть до нынешнего периода идет ее усовершенствование, а также на ее базе продолжают селекцию породного типа. Рыбы данного стада стали базой для селекции карпов, выращиваемых в условиях тепловодного садкового хозяйства, находящегося на ТЭЦ в г. Белово Кемеровской области, они также известны как беловские карпы. В настоящий период селекция в стадах карпа ориентирована на поддержку и повышение продуктивности. Отбор проводится на повышении скорости роста, а также – плодовитости рыб и выживаемости в 1-ых стадиях развития [20].
Цель исследований – изучение генетического разнообразия фрагмента (COX1 мтДНК) на основе морфологического анализа выявленных гаплотипов у рыб племенного ядра сарбоянского карпа, обитающих в ООО «Экопарк» Мошковского района Новосибирской области; изучение экстерьера рыб, входящих в выявленные гаплотипы, на основе изучения митохондриальной ДНК СОХ1 и установление морфологический различий между ними.
Материалы и методы исследования
Объектом исследования были самки и самцы сарбоянского карпа рыбоводного хозяйства ООО «ЭКО-ПАРК» Мошковского района Новосибирской области.
Изучение генетического разнообразия проводили методом полимеразной цепной реакции (ПЦР, PCR) по методу Кэри Мюллис (1983). Полимеразная цепная реакция (ПЦР) – исследовательский метод молекулярной биологии, способ существенного повышения небольших концентраций конкретных частей нуклеиновой кислоты (ДНК) в биологическом использованном материале, в дальнейшем была усовершенствована [21].
Метод секвенирования ДНК был разработан в 1977 году. Он основан на избирании и включении, обрывающих цепь, дидезоксинуклеотидов с помощью ДНК-полимеразы во время репликации ДНК. Методика создана Фредериком Сэнгером и др. в 1977 году [22].
Для осуществления генетического анализа образцы плавниковой ткани карпа были взяты у 75 экземпляров размером 3-4 мм2. Материал собирали прижизненно. Фрагмент спинного плавника отрезали и фиксировали в 96% этиловом спирте на местах сбора материала. Общую геномную ДНК выделяли с помощью Chelex 100. Выделенную ДНК хранили при температуре 4ОC. Амплифификацию фрагмента гена СОХ1 мтДНК проводили в реакционной смеси объемом 20 мкл, с использованием разработанных праймеров 5'-TCAACCAACCACAAAGACATTGGCAC-3' Forward и 5'-TAGACTTCTGGGTGGCCAAAGAATCA-3' Reverse. Полученные продукты проверяли в 1% агарозном геле и очищали посредством PEG6000 c и отмывкой в 70% этиловом спирте. Секвенирование в прямом и обратном направлении проводили в компании «Евроген» [23]. В итоге были получены последовательности длиной 566 нуклеотидных оснований. Выравнивание последовательностей проводили вручную в программе BioEdit v3.6.3.
Филогенетический анализ последовательностей нуклеотидов проводили с помощью пакета программ MEGA4. Анализ генетической изменчивости и филогенетических связей проводили в программе dnsp5. Кроме собственных сиквенсов использовали сиквенсы из NCBI.
У данных рыб изучали экстерьер по общепринятым методикам. Морфологический анализ был проведен во время осенней бонитировки племенного стада по методике измерений И.Ф. Правдина [24]. Расчеты индексов экстерьера вели по Ф.Г. Мартышеву, оценка племенной ценности самок и самцов проведена согласно инструкции по бонитировке карпа, разработанной авторами породы [25]. При отборе были выбраны промеры, связанные с направлением селекции – масса рыбы в данном возрасте (Q), абсолютная длина тела (L), длина тела без хвостового плавника (l), наибольшая длина головы (С), наибольшие высота (Н), обхват (W) и толщина (В) тела. Были рассчитаны индексы телосложения: прогонистости, как отношение l/H, обхвата – W/l×100%, широкоспинности –B/l×100%, высокоспинности – H/l×100%. Индекс упитанности определяли по формуле Р. Фультона: Кф= Q×100 / L3, где Кф – коэффициент упитанности; Q - вес рыбы, г; L - длина рыбы от начала рыла до конца чешуйного покрова, см. Материал обработан статистически по алгоритмам А.Н. Плохинского (1961), с использованием пакета прикладных программ Microsoft Offis [38].
Результаты исследований
Для анализа были взяты рыбы исходного стада, отобранные для восстановления породы сарбоянский карп, обитающие в племрыбхозе OOO «Экопарк» Мошковского района Новосибирской области. Они были представлены особями разного возраста от 4+ до 9+ лет. Оценка фенотипа показала, что отобранные рыбы отличаются от стандарта породы по признакам прогонистости и обхвату на 2-3%. Форма тела самцов стала более низкой и вальковатой. Это связано с отсутствием племенной работы в течение 20 лет.
Таблица 1. Экстерьер половозрелых самок основного селекционного стада
Table 1. Exterior of mature females of the main breeding herd
|
Показатель |
Средняя масса тела, г |
Абсолютная длина тела, см |
Индексы телосложения |
Коэффициент упитанности |
|||
|
прогонистости |
широкоспинности |
обхвата |
|
||||
|
4+ |
|||||||
|
|
3872,00±126,05 |
59,93±1,12 |
3,23±0,05 |
17,96±0,38 |
78,56±1,17 |
2,89±0,09 |
|
|
Cv,% |
12,61 |
7,21 |
5,62 |
8,16 |
5,77 |
12,05 |
|
|
5+ |
|||||||
|
|
5073,08±162,53 |
65,40±0,71 |
3,20±0,04 |
18,89±0,51 |
81,22±1,10 |
2,86±0,07 |
|
|
Cv,% |
16,34 |
5,57 |
5,81 |
13,84 |
6,89 |
11,96 |
|
|
6+ |
|||||||
|
|
5760,53±144,37 |
69,66±0,65 |
3,33±0,04 |
18,42±0,42 |
79,88±1,11 |
2,64±0,07 |
|
|
Cv,% |
14,24 |
4,14 |
5,43 |
10,32 |
6,20 |
11,36 |
|
|
7+ |
|||||||
|
|
6388,89±182,91 |
73,28±0,79 |
3,38±0,06 |
18,18±0,58 |
78,38±1,5 |
2,52±0,08 |
|
|
Cv,% |
8,59 |
3,24 |
5,61 |
9,58 |
5,73 |
9,23 |
|
|
8+ |
|
||||||
|
|
7260,00± 40,00 |
75,25±2,40 |
3,40±0,10 |
19,59±0,46 |
78,69±1,82 |
2,74±0,14 |
|
|
Cv,% |
1,23 |
7,15 |
6,89 |
5,24 |
5,17 |
11,27 |
|
|
9+ |
|||||||
|
|
8200,00±57,74 |
79,50±0,29 |
3,41±0,29 |
17,28±0,16 |
78,15±3,54 |
2,39±0,07 |
|
|
Cv,% |
1,22 |
0,63 |
14,54 |
1,62 |
7,84 |
4,96 |
|
Упитанность рыб, рассчитанная по Фультону, колеблется в пределах от 2,39 до 2,89. Известно, что нормативный показатель упитанности для племенных карпов сарбоянской породы равен 2,3-3,0.
От шестилеток к десятилеткам у самок данного стада повышается прогонистость, но понижаются на 8,52% индекс широкоспинности и на 3,8% – индекс обхвата. В связи с этим, с возрастом у рыб увеличивается индекс прогонистости на 6,15%. Обычно в стадах карпа отмечается положительная корреляция между возрастом и увеличением приведенных индексов. В нашем случае эта связь нарушена, и скорее всего это является следствием недостаточного кормления половозрелых рыб, о чем свидетельствует невысокая упитанность. При низкой упитанности рыбы вынуждены тратить питательные вещества на генеративный рост половых продуктов в ущерб соматическому.
Средняя масса самцов исходного маточного стада составляет 3136,36 г (табл. 2). У самцов всех возрастных групп упитанность находится в рамках нормативных показателей и колеблется в пределах от 2,56 до 3,33. Наибольший индекс прогонистости отмечен у рыб 5-летнего возраста с показателем 3,31. По индексам широкоспинности и обхвата тела рыбы четырехлетнего возраста превосходят все остальные возрастные группы. Самцы, как и самки, имеют выраженный сазаний тип телосложения.
Таблица 2. Экстерьер половозрелых самцов основного селекционного стада
Table 2. Exterior of mature males of the main breeding herd
|
Показатель |
Средняя масса тела, г |
Абсолютная длина тела, см |
Индексы телосложения |
Коэффициент упитанности |
||
|
прогонистости |
широкоспинности |
обхвата |
|
|||
|
Возраст 3+ |
||||||
|
|
2463,64 ±89,72 |
48,41 ±0,87 |
3,02±0,05 |
19,28±0,32 |
83,52±0,94 |
3,33±0,08 |
|
Cv,% |
12,08 |
5,95 |
4,98 |
5,45 |
3,73 |
7,88 |
|
Возраст 4+ |
||||||
|
|
3200± 200,00 |
58,00±1,0 |
3,31±0,06 |
17,18±1,18 |
82,8±4,87 |
2,64±0,24 |
|
Cv,% |
8,83 |
2,44 |
2,95 |
9,74 |
8,32 |
13,09 |
|
Возраст 5+ |
||||||
|
|
4191,66± 85,69 |
62,58±0,84 |
3,23±0,06 |
18,25±0,44 |
80,30±1,09 |
2,65±0,08 |
|
Cv,% |
7,08 |
4,64 |
6,38 |
8,26 |
4,69 |
10,76 |
|
Возраст 6+ |
||||||
|
|
5111,76± 155,51 |
67,97±0,82 |
3,32±0,04 |
18,28±0,18 |
78,88±0,89 |
2,56±0,04 |
|
Cv,% |
12,54 |
4,98 |
4,62 |
4,07 |
4,63 |
6,70 |
|
Возраст 7+ |
||||||
|
|
6650,00± 350,00 |
73,75±1,25 |
3,20±0,01 |
17,81±2,19 |
82,62±0,58 |
2,64±0,23 |
|
Cv,% |
7,44 |
2,40 |
0,11 |
17,37 |
1,00 |
12,45 |
Филогенетические отношения, изученные способом построения медианной сети гаплотипов, в основе нуклеотидных последовательностей гена COX1 мтДНК, продемонстрировали, то что рассматриваемые гаплотипы карпа и дикого сазана формируют две гаплогруппы, связанные посредством 1-го гаплотипа (рис.1).
Сарбоянский карп представлен 3-мя гаплотипами, 75% из которых вступают в звездообразную структуру (H1). Другие 25% представлены разными породами карпа и сазана, равно как Евразии, так и Северной Америки. Оставшиеся 3 гаплотипа (H15, 16, 17) карпа сарбоянской породы связаны вместе с основным гаплотипом через одну замену.
Рисунок 1. Медианная сеть гаплотипов на основе нуклеотидных последовательностей митохондриального гена COX1. Красным выделены гаплотипы сарбоянской породы карпа
Figure 1. Median haplotype network based on nucleotide sequences of the mitochondrial gene COX1. The haplotypes of the Sarboyan carp breed are highlighted in red
Для анализа генетического полиморфизма, по фрагменту (566 bp) гена CОХ1, были выбраны 73 самки и самца в соотношении 1:2 (табл. 3).
Гаплогруппа H1 является самой большой по количеству рыб и составляет 39 шт. в процентном соотношении 78%. Группы H15 и H17 являются самыми немногочисленными по количеству, в них входят по одной особи или 2%, а в гаплогруппe H16 входят 15 рыб, она занимает 18% общего количества.
Таблица 3. Структура стада по гаплотипам
Table 3. Herd structure by gallotypes
|
Гаплотипы |
Количество особей |
Структура в % |
|
H1 |
39 |
78 |
|
H15 |
1 |
2 |
|
H16 |
9 |
18 |
|
H17 |
1 |
2 |
|
Всего рыб, шт. |
50 |
100 |
Нами была проведена оценка индексов телосложения между наиболее многочисленными группами. Она показала, что по индексам телосложения различия существуют только по индексам длины тела (табл. 4).
Таблица 4. Средние показатели телосложения рыб в гаплогруппах
Table 4. Average indicators of the physique of fish in haplogroups
|
Показатель |
Промеры особей по гаплогруппам |
|||||
|
масса, г Q |
абсолютная длина тела, см L |
длина головы, см C |
высота тела, см H |
толщина, см B |
обхват, см V |
|
|
H1 |
6291,25 |
68,925 |
13,425 |
17,7325 |
11,1325 |
46,81 |
|
H15 |
4800 |
59 |
11,5 |
16,5 |
10 |
42 |
|
H16 |
5706,41 |
66,30 |
12,90 |
17,81 |
10,31 |
46,21 |
|
H17 |
4800 |
61 |
11,5 |
15,5 |
10 |
41,5 |
|
tdH1 и H16 |
2,01 |
1,62 |
1,30 |
-0,19 |
2,43 |
0,51 |
Внутри гаплогруппы существует половой диморфизм по экстерьеру самцов от самок. Они достоверно отличаются по массе, толщине и обхвату тела.
В гаплогруппе H16 самцы достоверно превосходят самок по массе тела, толщине и длине головы. При этом обхват тела имеет тенденцию к уменьшению у самок (табл. 5).
Таблица 5. Сравнительный анализ гаплогрупп по морфологическим признакам
Table 5. Comparative analysis of haplogroups by morphological features
|
M±m |
Экстерьерные показатели рыб в гаплогруппе H1 |
|
||||
|
масса, г Q |
высота тела, см H |
толщина, см B |
длина головы, см C |
обхват V |
|
|
|
Гаплогруппа H1 |
||||||
|
самец |
5729,41±167,10 |
17,37±0,26 |
10,67±0,10 |
12,94±0,25 |
45,35±0,63 |
|
|
самка |
6686,4±214,3 |
17,95±0,21 |
11,43±0,22 |
13,64±0,35 |
47,89±0,55 |
|
|
td |
3,52 |
1,74 |
3,11 |
1,61 |
3,04 |
|
|
Гаплогруппе H16 |
||||||
|
самец |
5780±461,95 |
18,4±0,53 |
9,7±0,37 |
13,4±0,51 |
46,7±2,32 |
|
|
cамка |
5325±131,50 |
17,125±0,315 |
10,75±0,60 |
12±0,35 |
44,75±0,48 |
|
|
td |
0,95 |
2,06 |
1,49 |
2,26 |
-0,82 |
|
|
При сравнении экстерьеров самцов в гаплогруппах H1 и H16 разделить по сравнению |
||||||
|
самец Н1 |
5263,1±614,9 |
14,55±1,65 |
9,21±0,96 |
10,61±1,17 |
45,35±0,63 |
|
|
самец H 16 |
5780±461,95 |
18,4±0,53 |
9,7±0,37 |
13,4±0,51 |
46,7±2,32 |
|
|
td |
0,68 |
2,22 |
0,47 |
2,18 |
0,56 |
|
|
При сравнении экстерьеров самок в гаплогруппах H1 и H16 |
||||||
|
самка h1 |
6686,4±214,3 |
17,95±0,21 |
11,43±0,22 |
13,64±0,35 |
47,89±0,55 |
|
|
самка h16 |
5325±131,50 |
17,125±0,315 |
10,75±0,60 |
12±0,35 |
44,75±0,48 |
|
|
td |
5,41 |
2,18 |
2,98 |
3,33 |
4,30 |
|
Сравнение самцов из разных групп H1 и H16 не выявило различий морфологических признаков, те же закономерности установлены по отношению к экстерьеру самок. Различия возникают в большей мере в связи с разной массой самок, т.к. они все выращивались в разных условиях.
Таблица 6. Сравнение индекса самок и самцов в гаплогруппах H 1 и H16
Table 6. Comparison of the index of females and males in haplogroups H 1 and H16
|
Показатели |
Индексы телосложения |
||||
|
прогонист ости, l/Н |
большеголовости, % С/l*100 |
высокоспин ности, % H/l*100 |
толщины тела, % B/l*100 |
обхвата (компактно сти), % V/l*100 |
|
|
Гаплогруппа H1 |
|||||
|
самки ♀* |
3,38±0,05 |
22,52±0,37 |
29,72±0,49 |
18,92±0,42 |
79,23±1,17 |
|
самцы ♂ |
3,32±0,76 |
22,62 ±0,40 |
30,22 ±0,42 |
18,58 ±0,21 |
78,88 ±0,89 |
|
td между ♀ и ♂ H1 |
0,08 |
0,18 |
0,77 |
0,72 |
0,23 |
|
Гаплогруппа H16 |
|||||
|
самки ♀ |
3,21±0,12 |
22,54±0,38 |
32,23±1,05 |
20,24±1,33 |
84,22±2,43 |
|
самцы ♂ |
3,11±0,01 |
23,12±0,62 |
31,78±0,79 |
16,73±0,43 |
80,39±1,93 |
|
td между ♀ и ♂ H16 |
0,33 |
0,80 |
0,35 |
2,51 |
1,23 |
|
Сравнение гаплогрупп H1 и H16 между самками: |
|||||
|
самки ♀ H1 |
3,38±0,05 |
22,52±0,37 |
29,72±0,49 |
18,92±0,42 |
79,23±1,17 |
|
самки ♀ H16 |
3,11±0,12 |
22,54±0,38 |
32,23±1,05 |
20,24±1,33 |
84,22±2,43 |
|
td между ♀♀ H1 и H16 |
2,88 |
0,04 |
1,87 |
0,98 |
1,85 |
|
Сравнение гаплогрупп самцами H1 и H16: |
|||||
|
самцы ♂ H1 |
3,32±0,76 |
22,62 ±0,40 |
30,22 ±0,42 |
18,58 ±0,21 |
78,88 ±0,89 |
|
самцы ♂ H16 |
3,15±0,07 |
23,12±0,62 |
31,78±0,79 |
16,73±0,43 |
80,39±1,93 |
|
td между ♂♂ H1 и H16 |
1,63 |
0,11 |
1,53 |
1,19 |
1,72 |
*Примечание: ♀ самка; ♂ самец
При сравнении данных между самками – 22 и самцами – 17 в гаплогруппе H1 выявлена тенденция к увеличению высокоспинности и большеголовости, также как сравнение самцов – 5 особей и самок – 4 особей в гаплогруппе H16 показало, что есть значительное увеличение индексов по сравнению с группой H1 по большеголовости, высокоспинности и компактности (табл. 6).
Вследствие выделения и обрабатывания образов, выявлено то, что сарбоянская порода карпа с прудов Новосибирской области характеризуется низкими признаками генетического полиморфизма по фрагменту (566 bp) гена CОХ1. Необходимо выделить значительное нуклеотидное и гаплотипическое многообразие сарбоянского карпа. Это дает возможность утверждать, что при селекционной работе со стадом применяли ряд, отличных на генном уровне, самок разных породных направлений. В сравнении самок между гаплогруппами H1 и H16 выявилась тенденция к небольшому увеличению высокоспинности и большеголовости. Между самцами уже другие показатели – имеется тенденция к увеличению высокоспинности, компактности и большеголовости.
Таким образом, карпы в группах H1 и H16, имеющие преимущества в численности, по признакам фенотипа слабо отличаются друг от друга. Они образуют однородные фенотипические группы.
Выводы
1. На основании изучения генотипа сарбоянского карпа, разводимого в Мошковском районе в хозяйстве ООО «ЭКО-ПАРК», по фрагменту гена COX1 составлена медианная сеть гаплотипов. Она показала, что рассматриваемые гаплотипы карпа и дикого сазана формируют две гаплогруппы, связанные через 1 гаплотип.
2. Выявлены 4 гаплотипа, связанные с основной группой, при этом наибольшая численность особей в гаплотипе H1 равна 39, а в гаплотип H16 входит 9 экз. рыб. По одной особи входят в H15 и H17.
3. У проанализированных гаплотипов сарбоянского карпа выявлены невысокие показатели генетического полиморфизма. Рыбы, входящие в каждый из гаплотипов, мало отличаются по основным признакам экстерьера друг от друга. При сравнении самцов и самок гаплогрупп H1 и H16 отмечено увеличение у самцов гаплогруппы Н16 компактности, высокоспинности, а также большеголовости. У самок зафиксированы те же закономерности.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Вклад в работу авторов: Морузи И.В. – идея статьи, корректировка текста ее окончательная проверка, Елисеева Е.А. – подготовка обзора литературы, подготовка статьи, проведение генетических исследований, Разоков Н.Н. – сбор и анализ данных, подготовка статьи, Бочкарев Н.А. – подготовка статьи, проведение генетических исследований, Пищенко Е.В. – сбор данных, анализ, подготовка статьи.
The authors declare that there is no conflict of interest.
Contribution to the work of the authors: Moruzi I.V. – the idea of the article, correction of the text of its final verification, preparation of the article, Eliseeva E.A. – preparation of the literature review, preparation of the article, genetic research, Razokov N.N. – data collection and analysis, Bochkarev N.A. – preparation of the article, genetic research, Pishchenko E.V. – data collection, analysis, preparation of the article.
1. Gjedrem T, Robinson N, Rye M. (2012) The importance of selective breeding in aquaculture to meet future demands for animal protein: A review. Aquaculture. PP. 350-353: 117-129. doihttps://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.04.008
2. Итоги деятельности федерального агентства по рыболовству в 2021 году. itogi_raboty_rosrybolovstvo_za_2021_god.pdf . (Дата обращения 20 сентября 2023 г.)
3. Ninh NH, Ponzoni RW, Nguyen NH, Woolliams JA, Taggart JB, McAndrew BJ, et al. (2011) A comparison of communal and separate rearing of families in selective breeding of common carp (Cyprinus carpio): Estimation of genetic parameters. Aquaculture, 2011. Pp. 322-323: 39-46. https://hdl.handle.net/20.500.12348/1173
4. Dong Z, Nguyen NH, Zhu W. (2015) Genetic evaluation of a selective breeding program for common carp Cyprinus carpio conducted from 2004 to 2014. BMC Genet. P. 16(94). doi:https://doi.org/10.1186/s12863-015-0256-2.
5. Bauer C., Schlott G. (2004) Overwintering of farmed common carp (Cyprinus carpio L.) in the ponds of a central European aquaculture facility-measurement of activity by radio telemetry. Aquaculture. 241(1-4). Pp. 301-317. doihttps://doi.org/10.1016/j.aquacultural.2004.08.010
6. Palaiokostas C., Cariou S., Bestin A., Bruant J. S., Haffray P., Morin T., et al. (2018). Genome-wide association and genomic prediction of resistance to viral nervous necrosis in European sea bass (Dicentrarchus labrax) using RAD sequencing. Genet. Sel. Evol. Pp. 50:30. doi:https://doi.org/10.1186/s12711-018-0401-2’
7. Palaiokostas C., Kocour M., Prchal M., and Houston R.D. (2018). Accuracy of genomic evaluations of juvenile growth rate in common carp (Cyprinus carpio) using genotyping by sequencing. Front. Genet. 9:82. doi:https://doi.org/10.3389/fgene.2018.00082
8. Hulata G. (1995). A review of genetic improvement of the common carp (Cyprinus carpio L.) and other cyprinids by crossbreeding, hybridization and selection. Aquac, 129. P. 481-491.
9. Linhart O. (2008). A proposal and case study towards a conceptual approach of validating sperm competition in common carp (Cyprinus carpio L.), with practical implications for hatchery procedures. J. App. Ichthyol., 24. Pp. 406-409.
10. Vandeputte M. ( 2003). Selective breeding of quantitative traits in the common carp (Cyprinus carpio): a review. Aquat. Living Resour, 16. Pp. 399-407.
11. Wohlfarth G., Moav R., Hulata G. (1975). Genetic differences between Chinese and European races of the common carp. II. Multicharacter variation-a response to the diverse methods of fish cultivation in Europe and China. Hered, 34. Pp. 341-350.
12. Gjerde B. (1988). Complete diallel cross between six inbred groups of rainbow trout, Salmo gairdneri. Aquac.75. Pp.71-87.
13. Brody T., Wohlfarth G., Hulata G., Moav R. (1981). Application of electrophoretic genetic markers to fish breeding. IV. Assesment of breeding value of full-sib families. Aquac, 24. Pp.175-186
14. Vandeputte M., Kocour M., Mauger S., Rodina M., Launay A., Gela D., Dupont-Nivet M., Hulak M., Linhart O. (2008). Genetic variation for growth at one and two summers of age in the common carp (Cyprinus carpio L.): heritability estimates and response to selection. Aquac, 277. Pp. 7-13.
15. Иванова З.А., Морузи И.В., Пищенко Е.В. Алтайский зеркальный карп - новая высокопродуктивная порода прудовых рыб: монография. МСХ РФ. Новосибирск: НГАУ. 2002. 204 с
16. Иоганзен Б.Г. Рост карпа в Западной Сибири. // Информ. бюлл. ВНИОРХ. 1940. №6.
17. Иоганзен Б.Г., Петкевич А.Н. Акклиматизация рыб в Западной Сибири. Барабинск, отд. ВНИОРХ. 1951. Т. 5. 204 с.
18. Иванова З.А. Карп Западной Сибири. М.: Пищевая промышленность.1983. 113 с.
19. Иванова 3.А., Морузи И.В. Сообщение 1. Рыбоводно-биологическая характеристика алтайского зеркального карпа // Сиб. вестн. с.-х. науки. 1996. №3-4.
20. Морузи И.В., Иванова З.А., Жданова Н.И., Сапунов Л.Я., Буймов В.И. Селекционное достижение в животноводстве: новая порода прудовых рыб - алтайский зеркальный карп. Авторское свидетельство № 6135, по заявке № 269/82 от 7.05. 1992. Зарегистрирована в гос. реестре Роспатента 23.03.94.
21. Морузи И.В. Система создания и продуктивные качества алтайского зеркального карпа. Новосибирск. 1995. 66 с.
22. Hall T.A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT // Nucl. Ac. Symp. Ser. V. 41 Pp. 95-98.
23. Librado P., Rozas J. (2009). DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data // Bioinformatics. V. 25 Pp. 1451-1452.
24. Tamura K., Stecher G., Peterson D., Filipski A., Kumar S. (2013). MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 6.0. Mol Biol Evol. Dec. 30(12). 2725-9. DOI:https://doi.org/10.1093/molbev/ mst197.
25. Правдин И. Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром-сть. 1966. 376 с.
26. Морузи И.В., Законнова Л.И., Пищенко Е.В., Осинцева Л.А., Кропачев Д.В., Барсукова М.А., Селюков А.Г. Эффективность племенной работы со стадами карпа на юге Западной Сибири. // Рыбное хозяйство. 2019. № 1. С. 71-76.
27. Плохинский Н.А. Руководство по биометрии для зоотехников М.: Колос, 1969. 256 с.
